PRODUCT CLASSIFICATION
產品分類信帆生物:游離脂肪酸(NEFA)檢測試劑盒的正確使用方法
一、測定原理:
游離脂肪酸(NEFA)能與銅離子結合形成脂肪酸的銅鹽而溶于氯仿中,其含量與游離脂肪酸含量成正比。用銅試劑測定其中銅離子的含量,即可推算出游離脂肪酸的含量。
二、試劑組成與配制(50管/48樣):
試劑一:氯--仿(分析純),自備。
試劑二:緩沖液,40mL×1瓶,室溫保存6個月。
試劑三:銅試劑,甲液30mL×1瓶,乙液 30mL×1瓶,丙液 5mL×1瓶,4℃保存6個月。試劑三銅試劑的配制:按甲液∶乙液∶丙液=10∶9∶1的比例進行配制,需多少配多少,配好后4℃可保存二周。
試劑四:顯色劑,粉劑×2支,稀釋液10mL×2瓶,4℃保存3個月。試劑四顯色劑的配制:臨用時將1支粉劑溶解于1瓶10mL稀釋液中,配好后4℃可保存二周。
試劑五:棕櫚酸標準品粉劑×2支,溶劑50mL×1瓶,4℃保存3個月。1000µmol/L棕櫚酸標準品的配制:將一支粉劑用溶劑溶解后定容至20mL(注意用溶劑將裝粉劑的小離心管洗凈)。
試劑六:雙蒸水40mL×1瓶(做空白管用)。
三、操作步驟:
1、分別取玻璃試管進行編號(最好用帶蓋的磨口試管進行實驗,防止試劑揮發及更好的抽提)。
2、操作表:
空白管 | 標準管 | 測定管 | |
雙蒸水(mL) | 0.2 | 0.2 | |
1000µmol/L棕櫚酸標準品(mL) | 0.2 | ||
待測樣本(mL) | 0.2 | ||
試劑二緩沖液(mL) | 0.5 | 0.5 | 0.5 |
試劑三銅試劑(mL) | 1.0 | 1.0 | 1.0 |
三氯--甲-(mL) | 4.0 | 3.8 | 4.0 |
充分混勻抽提2分鐘,3500轉/分離心10分鐘,仔細吸去上層藍色液體及蛋白凝塊棄之,吸取下層抽提液2mL進行顯色。詳細操作見注。 | |||
下層抽提液(mL) | 2.0 | 2.0 | 2.0 |
顯色劑(mL) | 0.25 | 0.25 | 0.25 |
混勻,室溫放置2分鐘,在440nm,1cm光徑,三氯--甲-調零后比色 |
[注]:詳細操作步驟:
1、充分混勻準確抽提2分鐘(用秒表計時)。如果您沒有磨口試管,可用普通玻璃試管代替,但必須用保鮮薄膜封口,以便防止液體揮發及濺出。
2、抽提完后以3500轉/分離心10分鐘,若發現下層液體呈半凝固狀態、凝固層較厚或下層液體不足2mL時,則可用小玻棒或移液器吸嘴輕輕攪拌后再次離心,直至分層清楚。
3、 然后用注射器接上硬膜外麻醉針套吸取上層液體及凝固層并棄之。
4、另取一個注射器及硬膜外麻醉針心針套,將硬膜外麻醉針心插入針套中,小心插入下層抽提液中,拔出針心,接上注射器,吸取下層抽提液2.3~2.5mL至另一試管中。(這樣可避免上層液體及凝固層混入下層液體中,若混入上層液體及凝固層,則需重新離心后再取下層抽提液,否則會影響結果。)若偶然發現抽提液有霧狀混濁,可放入37℃水浴1~2分鐘即可。
5、再從上述試管中準確吸取2mL下層抽提液加入另一試管中,加顯色劑進行顯色。
6、比色皿在用雙蒸水沖洗干凈后,還必須用無水乙醇沖洗,然后加三氯--甲-調零,否則加入的三氯--甲-中會混有水珠(三氯--和水不互溶)。
7、操作工程中最好用玻璃管,某些材質的塑料離心管也可使用(用加入三氯---烷的方法驗證是否可用)。
以上七點為實驗成敗的關鍵。硬膜外麻醉針本所有售。
四、計算公式及舉例:
1、血清計算公式及舉例:
①、公式:見說明書
②、計算舉例:
取某人血清0.2mL按操作表進行游離脂肪酸測定。測得各管吸光度如下:空白管為0.045,標準管為0.311,測定管為0.159。則計算如下:
2、組織樣本計算公式及舉例:
①、公式:見說明書
Cpr:組織樣本蛋白濃度,gprot/L(prot指蛋白)。
注:非蛋白樣可以將樣本質量濃度替換蛋白濃度代入計算。
②、計算舉例:見說明書
取大鼠10%肝組織勻漿上清液0.2mL按操作表進行游離脂肪酸測定。測得各管吸光度如下:空白管為0.045,標準管為0.311,測定管為0.293。10%肝組織中蛋白濃度為12.24g/L,則計算結果如下:
五、注意點:
1、實驗必須用分光光度計比色,不可用酶標儀、半自動及全自動生化分析儀比色(有機溶劑對這些儀器會有損壞)。
2、顯色前吸取下層抽提液時,吸管不要觸及管壁,以免沾染管壁上粘著的銅試劑。下層抽提液必須清澈,否則會使結果偏高。
3、膽紅素可被試劑一抽提而干擾比色,故黃疸血清須做一對照管,即最后不加顯色劑而用正丁醇代替,在測定管光密度讀數中減去此對照管的光密度讀數。